Symposium "Liquid Biopsy: A New Era in Oncology – How Minimally Invasive Diagnostics Is Transforming Patient Care" am 21.03.2026

Liquid Biopsy bei malignen Tumorerkrankungen

Das MGZ entwickelt mit LIFE-CNA eine eigene Methode zum nicht-zielgerichteten Nachweis zirkulierender Tumor-DNA (ctDNA) und evaluiert diese aktuell in mehreren Forschungsprojekten bei unterschiedlichen Tumorentitäten. 

Übersicht

LIFE-CNA ermöglicht den Nachweis von ctDNA, ohne dass zuvor eine tumorspezifische Zielvariante bekannt sein muss.

Im Gegensatz zu zielgerichteten Verfahren benötigt LIFE-CNA keine tumor-spezifischen Hotspotvarianten zum Nachweis von ctDNA und ermöglicht so die Überwachung des Krankheitsverlaufes für alle Tumorpatient*innen unabhängig von entsprechenden Varianten. 

LIFE-CNA (LIquid biopsy Fragmentation, Epigenetic signature and Copy Number Alteration analysis) kombiniert vier cfDNA-Merkmale:

  • Somatische Copy-Number-Alterationen (inkl. fokaler SCNAs) 
  • Tumorfraktion 
  • Regionale cfDNA-Fragmentierung 
  • Globale cfDNA-Fragmentierung 
  • Chromatinsignaturen

Entwickelt und validiert wurde die Methode an 259 Plasmaproben von 50 Patient*innen mit kolorektalem Karzinom (CRC, Stadium I–IV) und 61 Kontrollpersonen. Insgesamt wurde ctDNA bei Diagnose in 81% der Patient*innen mit lokalisierter und 94% der Patient*innen mit metastasierter Erkrankung detektiert.

Wissenschaftliche Grundlage: Hallermayr A et al. Somatic copy number alteration and fragmentation analysis in circulating tumor DNA for cancer screening and treatment monitoring in colorectal cancer patients. J Hematol Oncol. 2022;15:125. doi.org/10.1186/s13045-022-01342-z 

LIFE-CNA – Die Kombination verschiedener cfDNA Merkmale (Created in https://BioRender.com). 

Nach der Etablierung bei kolorektalen Tumoren wird die Methode am MGZ für weitere Tumorentitäten weiterentwickelt und evaluiert. 

212 Plasmaproben von CRC Patient*innen
108 Plasmaproben von Patient*innen mit verschiedenen Tumorentitäten
154 Plasmaproben von gesunden Proband*innen
81% der Patient*innen mit lokalisiertem CRC
94% der Patient*innen mit metastasierter Erkrankung

Aktuelle Weiterentwicklung am MGZ

Das MGZ arbeitet aktuell an der Weiterentwicklung von LIFE-CNA mit dem Ziel, Sensitivität und Spezifität für den ctDNA-Nachweis weiter zu verbessern.

Über die in der Originalpublikation integrierten Merkmale hinaus werden am MGZ komplementäre cfDNA Merkmale evaluiert:
  • End-Motive: Charakteristische Sequenzmotive an den Enden von cfDNA-Fragmenten
  • Methylierung: Tumorspezifische Methylierungsmuster
  • Nukleosomendichte: Chromatinstruktur in definierten Genomregionen
Alle cfDNA Merkmale, welche mit LIFE-CNA bestimmt werden, werden in einem integrativen Machine-Learning-Classifier kombiniert, um ein sensitives und spezifisches ctDNA-Signal zu erzeugen.

Aktuelle Forschungsprojekte

LIFE-CNA wird derzeit für mehrere onkologische Fragestellungen evaluiert, die sich in Tumorentität, klinischem Kontext und diagnostischer Zielsetzung unterscheiden.

Alle hier vorgestellten Forschungsprojekte werden über Drittmittel finanziert. Aktuell wird die Methode für folgende Tumorentitäten evaluiert:
  • Mammakarzinom: Frühe Stadien
  • Prostatakarzinom: Subtyp-Klassifizierung bei aggressivem Prostatakarzinom – Kooperation mit Dr. Lina Bergmann, UKE Hamburg
  • Gastrointestinale Tumoren: mikrosatelliteninstabil – Kooperation mit PD Dr. Aysel Ahadova, Universitätsklinikum Heidelberg
  • IPMN (Intraduktale papillär-muzinöse Neoplasie): Risikostratifizierung – Konsortialprojekt PreCyZe
  • NMIBC (Nicht-Muskelinvasives Harnblasenkarzinom): Therapiemonitoring – Konsortialprojekt BlaCaPOx

Kooperationsprojekte mit dem LMU Klinikum München

PreCyZe und BlaCaPOx sind wissenschaftliche Konsortialprojekte in denen das LMU Klinikum München als Partner für die cfDNA Analyse fungiert. Das MGZ ist in diesen Projekten kein direkter Konsortialpartner, sondern unterstützt das LMU Klinikum als Kooperationspartner bei der Durchführung und Interpretation der cfDNA-Analysen.

Abb. 3: Kooperationsablauf LMU Klinikum – MGZ (PreCyZe, BlaCaPOx). Beide Partner bringen wissenschaftlichen Input ein; das MGZ übernimmt Sequenzierung und Bioinformatik, die Ergebnisse fließen zur Interpretation an das LMU Klinikum zurück (Created in  https://BioRender.com).

PreCyZe Deutsche Krebshilfe

Liquid Biopsy Signaturen für die personalisierte Diagnosestellung und Risikoabschätzung bei intra-duktal papillär muzinösen Neoplasien des Pankreas
  • Projektart: Wissenschaftliches Verbundprojekt
  • Förderung: Deutsche Krebshilfe (Förderschwerpunkt Translationale Onkologie, Ausschreibung 2024)
  • Koordinator: PD Dr. Georg Beyer, Klinikum der Universität München, Campus Großhadern, Medizinische Klinik und Poliklinik II
  • Rolle des MGZ: Kooperationspartner der Medizinischen Klinik und Poliklinik IV des LMU Klinikums für cfDNA-Sequenzierung und Dateninterpretation
  • Weitere Projektinformationen: Deutsche Krebshilfe – Förderschwerpunkt Translationale Onkologie
Die Rekrutierung erfolgt am Klinikum der Universität München, Campus Großhadern, Medizinische Klinik und Poliklinik II sowie an Standorten der Pancreatic Cancer Alliance Bavaria (PCAB).

BlaCaPOx EP PerMed

Pharmaco-omics strategies to guide personalised medicine in BCG-treated patients with Bladder Cancer
  • Projektart: Wissenschaftliches Verbundprojekt, europäisches Konsortium
  • Förderung: EP PerMed – European Partnership for Personalised Medicine
  • Koordinatorin: Dr. Maria Frantzi, Mosaiques Diagnostics GmbH
  • Rolle des MGZ: Kooperationspartner der Medizinischen Klinik und Poliklinik IV des LMU Klinikums für cfDNA-Sequenzierung und Dateninterpretation
Weitere Projektinformationen: EP PerMed – Projektdatenbank: BlaCaPOx

Die Rekrutierung erfolgt an der Medizinischen Universität Innsbruck und dem Instituto Maimónides de Investigación Biomédica de Córdoba

Publikationen

Hallermayr A, Wohlfrom T, Steinke-Lange V, Benet-Pagès A, Scharf F, Heitzer E, Mansmann U, Haberl C, de Wit M, Vogelsang H, Rentsch M, Holinski-Feder E, Pickl JMA. Somatic copy number alteration and fragmentation analysis in circulating tumor DNA for cancer screening and treatment monitoring in colorectal cancer patients. J Hematol Oncol. 2022;15:125.

Grundlagenpublikation zu LIFE-CNA · doi.org/10.1186/s13045-022-01342-z

Hallermayr A, Steinke-Lange V, Vogelsang H, Rentsch M, de Wit M, Haberl C, Holinski-Feder E, Pickl JMA. Clinical Validity of Circulating Tumor DNA as Prognostic and Predictive Marker for Personalized Colorectal Cancer Patient Management. Cancers (Basel). 2022;14(3):851.

doi.org/10.3390/cancers14030851

Hallermayr A, Benet-Pagès A, Steinke-Lange V, Mansmann U, Rentsch M, Holinski-Feder E, Pickl JMA. Liquid Biopsy Hotspot Variant Assays: Analytical Validation for Application in Residual Disease Detection and Treatment Monitoring. Clin Chem. 2021;67(11):1483–1491.

doi.org/10.1093/clinchem/hvab124

Hallermayr A, Neuhann TM, Steinke-Lange V, Scharf F, Laner A, Ewald R, Liesfeld B, Holinski-Feder E, Pickl JMA. Highly sensitive liquid biopsy Duplex sequencing complements tissue biopsy to enhance detection of clinically relevant genetic variants. Front Oncol. 2022;12:1014592.

doi.org/10.3389/fonc.2022.1014592

Hallermayr A, Keßler T, Fujera M, Liesfeld B, Bernstein S, von Ameln S, Schanze D, Steinke-Lange V, Pickl JMA, Neuhann TM, Holinski-Feder E. Impact of cfDNA Reference Materials on Clinical Performance of Liquid Biopsy NGS Assays. Cancers (Basel). 2023;15(20):5024.

doi.org/10.3390/cancers15205024

Hallermayr A, Keßler T, Steinke-Lange V, Heitzer E, Holinski-Feder E, Speicher M. The utility of liquid biopsy in clinical genetic diagnosis of cancer and monogenic mosaic disorders. Med Genet. 2023;35(4):275–284.

doi.org/10.1515/medgen-2023-2066

Pantel K, Alix-Panabières C, Hofman P, Stoecklein NH, Lu YJ, Lianidou E, et al. (inkl. Hallermayr A). Fostering the implementation of liquid biopsy in clinical practice: meeting report 2024 of the European Liquid Biopsy Society (ELBS). J Exp Clin Cancer Res. 2025;44(1):156.

doi.org/10.1186/s13046-025-03398-4

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